隨著鄉村振興戰略的實施，農村居民的生活水平顯著提高，洗衣機、熱水器等家用電器的普及導致農村地區人均日用水量急增。《2020年中央一號文件》顯示，我國農村地區每年產生的生活污水高達90多億噸，由于居民居住分散及地勢差異，農村污水處理設施建設難度加大，僅有部分村鎮生活污水得到了集中凈化。未經處理的農村生活污水含有過量的病原微生物、有機污染物和氮磷營養元素，這些污染物質的直接輸入導致河流湖泊等水體富營養化，如藻類大量繁殖、氧氣耗竭、生物多樣性下降和淡水生態系統的廣泛退化，對流域水環境造成巨大壓力。目前，人工濕地、生態浮島、生態溝渠等生物生態工程技術逐漸成為農村污水凈化的有效措施。然而這些方法對土地需求較高，限制了山地丘陵區的污水凈化。生物濾池憑借占地面積小、污泥產量低、高營養物去除率、易于維護運行等優點被廣泛應用于丘陵山區。韓陽等對低山丘陵區的生物濾池系統進行連續一年的監測，結果表明級聯生物濾池對TN、總磷（TP）的平均削減率較高，且污水凈化效果主要與進水濃度、溫度、生物量、水力負荷等相關。古騰等基于曝氣生物濾池－模塊化人工濕地組合工藝治理農村生活污水，結果表明該組合工藝具有可行性，凈化效率分別為NH3-N（95.29%）、TN（67.65%）、TP（91.42%）出水水質可達GB18918—2002一級A標準。朱彬等研究不同植物類型條件下生態濾池的凈化效果，結果表明菖蒲對NH3-N（92%）和TP（47%）的去除效果最佳；而風車草與菖蒲組合去除TN（49%）能力最佳。
生物濾池對污水的凈化充分利用了植物、動物、浮游生物和微生物的協同作用。微生物是其中關鍵組成部分，通過生物吸附、生物沉淀、細胞內積累和氧化還原固定等多種機制消除水體污染物、凈化水質。微生物群落與水體環境具有密切的聯系，其群落組成能夠反映水體環境的變化，因此水體微生物信息對于富營養化水體的治理具有重要意義。底泥作為水體污染物的“源”和“匯”，蘊含著比水體更為豐富的微生物群落，但是目前針對污水生態處理體系微生物群落組成研究較為有限，很多高效脫氮微生物難以得到有效的開發。因此，本研究利用16SrRNA擴增子高通量測序技術，以四川盆地中部丘陵區某村鎮建設的一套無動力級聯生物濾池系統為對象，闡明生物濾池對村鎮生活污水的凈化效果和不同層級生物濾池微生物群落結構差異以及主要環境因子，為明確山區生物濾池的凈化機制提供科學依據
1、材料與方法
1.1 研究區概況
試驗設置在四川盆地中部偏北的綿陽市鹽亭縣林山鄉中國科學院鹽亭紫色土農業生態試驗站（105º27′24″E，31º16′31″N），實驗所在地區地形以丘陵為主，海拔400-600m，紫色土分布廣泛，屬中亞熱帶濕潤性季風氣候，年平均氣溫17.3℃，多年平均降雨量826mm,降雨集中在每年的4-10月。林山鄉面積約1.26hm2，常住人口800人，村鎮分布有少量商鋪和餐館，每天大約產生30-150m3的生活污水。該地區無雨污分流系統，污水直接排入溝渠。
1.2 生物濾池
生物濾池（圖1）依據地勢沿坡面建設，由兩棲植物反應濾池（1.5m×1.5m×1.5m）和同尺寸的水生植物反應濾池從高到低交替銜接，通過高程差形成自流跌落曝氣通道，配置水陸兩棲植物并形成干濕交替的氧化-還原環境。生物濾池共6個梯級，每個梯級設置3組平行反應池，按照污水水流方向依次是B1，B2，……，B6.各生物濾池底部鋪設厚度為20cm的生物炭、碎石和紫色土母質；反應池中種植篩選好的、根系發達、抗污染和易于成活的水生/兩棲植物，其中兩棲植物反應濾池構筑中心島，并種植小葉榕，其根系培育為蜂窩網狀結構，具有大面積生物膜附著表面，同時種植高富集氮磷水生植物（銅錢草、狐尾藻），水生植物反應池內種植浮水或沉水植物（銅錢草、狐尾藻）。
1.3 樣品采集及理化分析
于2019年10月至2020年9月使用干凈的聚乙烯瓶采集生物濾池進水、出水樣品，每隔5d采集一次。選擇污水處理效果較好的夏季從B1、B2、B5、B6梯級濾池（圖1）3個平行池各采集一份水樣（N=12），每隔5d采集一次，持續時間一個月。用抓斗式采泥器采集B2、B5濾池內部左、中、右各采集一份底泥（N=6），放入無菌聚乙烯自封袋帶回實驗室，存入-20℃的冰箱用于分子生物學分析。水樣采集完畢立即送到實驗室分析，用0.45μm濾膜過濾后，使用流動分析儀（AutoAnalyzer3；SEAL，Germany）測定濾液NO3--N、NO2--N、NH4+-N、TDN、DOC、總溶解態磷（TDP）、正磷酸鹽（PO43--P）濃度；采用堿性過硫酸鉀紫外分光光度法測水樣TN濃度；使用鉬酸銨分光光度法測定水樣TP濃度。
1.4 樣品DNA提取、PCR擴增和高通量測序
隨機選擇夏季采集樣品，其中水樣經濾膜（0.22μm）抽濾，將濾膜及底泥保存在干冰箱中運送至上海派森諾生物科技股份有限公司。使用FastDNASPIN提取試劑盒（MPBiomedicals，SantaAna，CA，USA），提取細菌基因組DNA，采用NanoDropND-1000分光光譜儀（ThermoFisherScientific，Waltham，MA，USA）和瓊脂糖凝膠電泳分別對提取的DNA進行定量和定性分析。以338F-806R（338F：ACTCCTACGGGAGGCAGCA；806R：CGGACTACHVGGGTWTCTAAT）為引物對細菌16SrRNA基因V3-V4多變區進行擴增；PCR反應參數如下：熱循環包括98℃初始變性2min，然后25個循環，98℃變性15s，55℃退火30s，72℃延伸30s，最后72℃延伸5min。PCR擴增產物用AgencourtAMPureBeads（BeckmanCoulter，Indianapolis，IN）純化，并用PicoGreendsDNA檢測試劑盒（Invitrogen，Carlsbad，CA，USA）定量。在IllluminaMiSeq平臺上，利用MiSeq試劑盒v3進行了2300bp的雙末端序列測定。使用QIIMEv1.8.0處理測序數據，將與條形碼精確匹配的原始測序讀數分配給各自的樣品并鑒定為有效序列。刪除低質量的序列：長度小于150bp的序列，Phred平均值小于20的序列，含有不明確堿基的序列，以及含有單核苷酸重復序列大于8bp的序列。剩余的高質量序列通過UCLUST以97%的序列同一性聚類成可操作的分類單元（OTUs）。并選取每個OTU中豐度最高的序列作為該OTU的代表序列，進行生物信息統計分析。
1.5 數據分析
采用Origin2019b繪制生物濾池氮磷去除率變化特征圖；采用SPSS21對不同層級濾池水體理化性質進行單因素方差分析，經正態性檢驗后使用LSD法進行差異顯著性檢驗，顯著性水平為P<0.05；使用QIIME和R（v3.2.0）“ggplot2”包進行多樣性指數分析（Shannon、Simpson、Chao1、Observed_species、Faith_pd、Pielou_e）。使用R（v3.2.0）“vegan”包在OTU水平上基于Unweighted_Unifrac距離進行非度量多維尺度分析（NMDS）分析以研究不同層級生物濾池細菌群落組成差異，同時使用Adonis分析檢驗細菌群落差異是否顯著；使用PythonLEfSe包及R（v3.2.0）“ggtree”包進行差異貢獻分析（lineardiscriminantanalysiseffectsize，LEfSe），篩選不同層級濾池之間穩健的差異物種，即標志物種（biomarker）。在派森諾基因云網https://www。genescloud。cn/home進行冗余分析（RDA）用于表示細菌（屬水平）和環境因子的關系。使用“psych”包進行Spearman相關分析并且使用“ggplot2”包繪制相關性氣泡圖。
2、結果與分析
2.1 生物濾池N、P去除率季節變化特征
通過對生物濾池進水、出水連續一年的監測（圖2），發現生物濾池對污染物去除效率呈現季節波動。其中NO3--N、TN、TDN、TP的去除效率在5-8月較高，12-2月較低；對NH4+-N、NO2--N、TDP和PO43--P的去除率在9-11月較高，12-2月較低。各形態污染物年平均去除率分別為NO3--N（40.34%）、NO2--N（67.71%）、TN（34.41%）、TDN（35.40%）、NH4+-N（50.83%）；TP（24.80%）、TDP（26.08%）、PO43--P（31.72%）。
2.2 不同層級生物濾池水體的理化性質
選取夏季不同層級生物濾池的水體進行理化性質分析，結果如表1所示，不同層級生物濾池水體的NO2--N、TN、TDN、NH4+-N、DOC存在顯著差異（P<0.05），TP、TDP、PO43--P、NO3--N濃度差異不顯著（P>0.05）；其中第五、六層級濾池水體DOC、TDN、TN顯著低于第一層級濾池水體，且第五、六層級濾池水體NH4+-N、NO2--N顯著低于第一、二層級濾池水體（P<0.05）。結果顯示在夏季降雨量增加、污染物濃度偏低情況下，生物濾池對水體富營養化元素N凈化效果較P明顯。
2.3 生物濾池水體及底泥細菌群落組成
采用16SrRNA高通量測序技術對生物濾池水體和底泥微生物群落組成進行分析，根據97%的相似度水平對樣本OTUs進行聚類，共鑒定出細菌53個門、150綱、364目、656科、1464屬。如圖3A顯示了水體環境相對豐度前10的優勢細菌門，包括變形菌門（Proteobacteria）、放線菌門（Actinobacteria）、擬桿菌門（Bacteroidetes）和厚壁菌門（Firmicutes）；優勢菌屬主要包括假節桿菌屬（Pseudarthrobacter）、黃桿菌屬（Flavobacterium）、C39、不動桿菌屬（Acinetobacter）、新鞘氨醇單胞菌屬（Novosphingobium）（圖3B）。
底泥（圖3C）優勢菌門主要為變形菌門（Proteobacteria）、擬桿菌門（Bacteroidetes）、綠彎菌門（Chloroflexi）、厚壁菌門（Firmicutes）和放線菌門（Actinobacteria），且存在與水體細菌不同的優勢菌門如互養菌門（Synergistetes）、嗜熱絲菌門（Caldiserica）、Spirochaetes。在屬水平上（圖3D），底泥細菌組成與水體細菌不同，其優勢菌屬主要為鞘氨醇單胞菌屬（Sphingomonas）、水小桿菌屬（Aquabacterium）、綠菌屬（Chlorobium）、Smithella、短波單胞菌屬（Brevundimonas）。
2.4 不同層級生物濾池水體和底泥細菌群落差異
不同層級生物濾池水體及底泥細菌α多樣性指數包括Chao1、Shannon、Simpson、Faith_pd指數和Pielou_E指數差異均不顯著（P>0.05）。NMDS分析發現不同層級生物濾池水體和底泥細菌群落組成區分明顯（圖4，Adonis分析，P=0.001），其中第一層級濾池水體細菌與其他層級區分最為明顯，第五、六層級水體細菌群落組成較為相似。
為進一步研究不同層級生物濾池水體微生物群落組成差異，采用LEfSe分析檢測潛在生物標志物（圖5，LDA閾值為2）。不同層級生物濾池之間共發現49個細菌類群豐度存在顯著差異（P<0.05）。其中第一層級濾池水體中沒有顯著的生物標志物。第二層級濾池水體的生物標志物類群最多，包括Gamma-proteobacteria綱（發酵桿菌目Thiotrichales、Competibacterales目、Competibacteraceae科、Candidatus_Competibacter屬、絲硫細菌科Thiothrix、莢硫菌屬Thiocapsa、Sulfuritalea屬），厚壁菌門Firmicutes（FamilyXIII科、瘤胃梭菌屬Ruminiclostridium、八疊球菌屬Sarcina、Anaerovorax屬），擬桿菌門Bacteroidetes（Prolixibacteraceae科、普雷沃菌屬Prevotella_7、Lentimicrobiaceae科），互養菌門Synergistetes（Syner_01屬），放線菌門Actinobacteria（博戈里亞湖菌科Bogoriellaceae、放線菌目Actinomycetales、Georgenia屬），WS2門（WS2綱、WS2目、WS2科、WS2屬），Deltaproteobacteria（NKB15目、NKB15科、NKB15屬）。第五層級濾池水體生物標志物包括髕骨細菌門Patescibacteria（Microgenomatia綱、Candidatus_Levybacteria目科屬、WWE3綱目科屬），氨基桿菌屬Aminobacter，疣微菌門Verrucomicrobia（Rubritaleaceae科、Luteolibacter屬），綠彎菌門Chloroflexi（暖繩菌目Caldilineales、暖繩菌科Caldilineaceae），浮霉菌綱Planctomycetacia。第六層級濾池水體的生物標志物為Gamma-proteobacteria綱（羅丹諾桿菌科Rhodanobacteraceae、Ellin6067屬、貪噬菌屬Variovorax），疣微菌門Verrucomicrobia（疣微菌屬Verrucomicrobium），浮霉菌門（Planctomycetes）。
2.5 水體細菌群落與環境因子之間的關系
選擇相對豐度前15的細菌群落（屬水平）與水環境因子進行冗余分析，結果（圖6）顯示，環境因子共同解釋了細菌群落差異的48.2%，其中第一軸和第二軸分別解釋了27.74%和16.46%，DOC、TDN、NO2--N、NH4+-N、NO3--N對微生物群落作用顯著（P<0.05），第一、第二層級濾池與第五、第六層級濾池的水體微生物群落被這些顯著的環境因子區分開。
TDN、DOC、NO2--N、NH4+-N與新鞘脂菌屬Novosphingobium、黃桿菌屬Flavobacterium、噬氫菌屬Hydrogenophaga、氣單胞菌屬Aeromonas、不動桿菌屬Acinetobacter顯著正相關（P<0.05），而與Saccharimonadales、假節菌屬Pseudarthrobacter、金黃桿菌屬Chryseobacterium、根瘤菌屬Allorhizobium-Neorhizobium-Pararhizobium-Rhizobium、羅爾斯通氏菌屬Ralstonia、假單胞菌屬Pseudomonas顯著負相關（P<0.05）；NO3--N與大部分優勢菌屬負相關（P<0.05），與普雷沃菌屬Prevotella_9、假節菌屬Pseudarthrobacter、Saccharimonadales顯著正相關（P<0.05）。
2.6 氮轉化功能微生物
不同層級生物濾池對水體富營養化元素氮去除能力較磷顯著，為進一步探究氮轉化相關微生物與環境因子之間的關系，采用FAPROTAX對水體細菌群落功能進行注釋，將獲得的15個氮轉化相關功能類群與水環境因子進行Spearman相關分析（圖7），結果顯示好氧氨氧化微生物與水體DOC、TDN、NO2--N、TN顯著負相關（P<0.05）；好氧亞硝酸鹽氧化微生物、硝化作用微生物與DOC、TDN、NO2--N、TN、NH4+-N顯著負相關（P<0.05）；硝酸鹽還原微生物與NO3--N顯著負相關（P<0.05）。
3、討論
3.1 生物濾池對生活污水的凈化效果
生物濾池對污水氮磷去除率隨著季節變化，整體表現為春夏秋季去除率高而冬季去除率最低；前人研究也發現季節間污染物的去除差異體現在溫度的顯著變化，系統內微生物活性受限于溫度，尤其是硝化和反硝化細菌，對溫度變化非常敏感，該地區冬季水溫常低于10℃，在10℃以下時硝化和反硝化細菌的代謝和活性趨于下降，脫氮效率受到抑制。總體而言生物濾池對NO3--N（40.34%）、NO2--N（67.71%）、NH4+-N（50.83%）的去除效果較好，且整年脫氮效果相對磷明顯
3.2 生物濾池水體和底泥細菌群落組成
生物濾池的穩定性是由優勢微生物維持的，在本研究中變形菌門（Proteobacteria）、放線菌門（Actinobacteria）、擬桿菌門（Bacteroidetes）、厚壁菌門（Firmicutes）是各層級生物濾池水體和底泥樣本的優勢菌門，在細菌群落中占主導地位。變形菌門細菌繁殖速度快，α-Proteobacteria、β-proteobacteria、δ-Proteobacteria和γ-Proteobacteria是富營養化環境中典型的細菌群落，其中包括豐富的硝化、反硝化、厭氧氨氧化和亞硝酸鹽氧化細菌，是有機物降解和硝化、反硝化等脫氮過程的主要參與者。先前的研究也表明變形菌門（Proteobacteria）在農村生活污水、淡水、污水處理廠、海洋沉積物、濕地和湖泊沉積物等環境中占據主導地位，顯示了其廣泛的分布。陳月芳等研究生物濾池對農村生活污水的凈化也發現Proteobacteria是最優勢菌門，顯示了其廣泛的分布。Wu等對全球269個污水處理廠的細菌群落的全球多樣性研究發現Proteobacteria占總體細菌群落82%，展現了其絕對優勢。王倩等對汾河沉積物的研究也表明變形菌門是優勢類群。絕大多數放線菌（Actinobacteria）為好氧或微好氧菌，其下某些屬如分枝桿菌屬（Mycobacterium）具有脫氮功能，還能夠參與有機物的分解和礦化。擬桿菌門（Bacteroidetes）是專性厭氧微生物，常用于指示作為水體糞便污染，研究發現擬桿菌門在生物脫氮的過程中發揮重要的作用；厚壁菌門（Firmicutes）能在有氧或缺氧的環境中進行代謝，并參與了硝化、反硝化過程。本研究發現的優勢菌門具有生物脫氮功能，這可能是生物濾池對N污染物消減效率較高的重要因素。本研究中發現的多個優勢屬在有機物降解和脫氮作用中也有報道：黃桿菌屬（Flavobacterium）是一種常見的異養反硝化菌，常出現在富含硝酸鹽的富營養水體中，同時它在有機物降解和碳循環中起著關鍵作用。不動桿菌屬（Acinetobacter）是一種異養硝化-好氧反硝化細菌，具有很好的脫氮性能。新鞘氨醇單胞菌（Novosphingobium）是鞘氨醇單胞菌（Sphingomonas）劃分出來的新屬，該菌屬廣泛存在于水體和底泥環境中，并且大多數都與有機污染物如多環芳烴、β-環檸檬醛、雌激素等的降解有關。氣單胞菌屬（Aeromonas）是一類兼性厭氧菌，可還原硝酸鹽為亞硝酸鹽。RDA分析顯示這些優勢菌屬與NO3--N顯著負相關，表明硝態氮濃度顯著影響這些反硝化功能菌。假單胞菌屬（Pseudomonas）是一種異養硝化好氧反硝化菌，該菌與TDN、DOC、NO2--N、NH4+-N顯著負相關，說明污水的這些污染物含量高可能抑制該菌的繁殖。本研究的優勢菌門和菌屬在污水脫氮方面發揮重要的作用。
3.3 生物濾池水體和底泥細菌群落差異
不同層級生物濾池水體細菌群落組成存在顯著差異（NMDS分析，Adonis分析），RDA分析也顯示污水NO2--N、TDN、NH4+-N、DOC對水體細菌群落結構影響顯著。第一、二層級生物濾池污水NO2--N、TDN、NH4+-N、DOC濃度偏高，其中第二層級生物濾池生物標志物數量也較多（圖5），存在多種硝化細菌，以γ-變形菌Gamma-proteobacteria占優勢，并且也發現多種放線菌門（Actinobacteria）、厚壁菌門（Firmicutes），這類好氧或者兼性脫氮菌主要通過好氧氨氧化、好氧亞硝酸鹽氧化和硝化作用降解污水DOC、TDN、NO2--N、TN、NH4+-N（圖7）；此外還存在互養菌門（Synergistetes），此類菌的所有菌種均參與了氨基酸的降解過程中。經過上層生物濾池的凈化，第五、六層級濾池水體N污染物濃度下降，標志性菌種數量也減少，第五層級濾池水體典型的生物標志物有綠彎菌門（Chloroflexi），研究表明綠彎菌門的分布極為廣泛，在普通環境到極端環境均有分布，并參與了硝化作用的第二步，即NO2--N的氧化過程。此外第五、六層級濾池水體中還共同出現了多種厭氧菌：浮霉菌門（Planctomycetes）是典型的厭氧氨氧化細菌，廣泛存在于淡水水體、污水處理系統等各種厭氧環境中，其大部分種類對污水氨氮及亞硝酸鹽有較好的去除作用。疣微菌門（Verrucomicrobia）是革蘭氏陰性細菌，廣泛存在于海洋、土壤和人體腸道中，能夠在厭氧條件下進行亞硝化作用。第二層級濾池水體的優勢好氧和兼性脫氮菌與第五、六層級濾池水體優勢厭氧菌的存在可能是導致上層濾池與末端濾池細菌群落結構差異的重要因素，第五、六層級濾池水體濾池中的多種厭氧菌也加快了污水氨氮和亞硝酸鹽的去除過程。
底泥和水體細菌群落存在顯著差異（P=0.001），這與其他人研究一致。底泥作為環境物質和底棲生物的重要載體，不僅富集大量的氮、磷營養元素，而且蘊含著比水體更豐富的微生物，與上覆水體進行著頻繁的能量和物質交換，使得底泥成為水體污染的潛在來源。底泥中的地球化學元素循環影響其微生物的多樣性，而底泥中微生物群落的改變又會影響水生生態系統中物質遷移和轉化，在一定程度上影響著水體微生物群落結構；同時，水質的變化也會促使底泥微生物群落發生改變。因此，底泥和水體微生物群落均是水生生態系統環境變化的重要指標，研究底泥與水體微生物群落對闡明營養物質循環和水體凈化具有重要意義。
3.4 生物濾池水體細菌氮轉化功能預測
FAPROTAX是目前廣泛運用的原核微生物分類的功能注釋數據庫，覆蓋了4600多個不同的原核微生物，對環境樣本中原核微生物的生物化學循環過程（碳、氫、氮、磷、硫等元素循環）進行功能注釋預測，其預測準確性較好。本研究分析結果顯示生物濾池中污水TN、TDN、NO2--N的去除與好氧氨氧化、好氧亞硝酸鹽氧化、硝化作用顯著相關（P<0.05），NH4+-N的去除與好氧亞硝酸鹽氧化、硝化作用顯著相關（P<0.05）。硝化作用由一類化能自養好氧的硝化細菌完成，氨氧化過程是硝化過程的限速步驟，多數氨氧化細菌屬于Betaproteobacteria和Gamma-proteobacteria類；亞硝酸鹽氧化作用是硝化反應的第二階段，已報道的歸類于變形菌門（Proteobacteria）、硝化刺菌門（Nitrospinae）、綠彎菌門（Chloroflexi）和硝化螺旋菌門（Nitrospirae）。本研究中變形菌門（Proteobacteria）和綠彎菌門（Chloroflexi）均是水體和底泥細菌的優勢菌門（圖3），在好氧氨氧化和亞硝酸鹽氧化過程中發揮了重要作用。硝酸鹽還原作用主要在缺氧或者厭氧條件下反硝化菌將NO3--N還原為N2O或N2，本研究結果發現該過程與NO3--N顯著負相關（P<0.05），優勢厭氧/兼性菌如擬桿菌門（Bacteroidetes）和厚壁菌門（Firmicutes）在反硝化過程中也發揮了重要作用。生活污水氮素污染主要以氨氮和有機氮形態存在，研究也發現生物濾池的脫氮過程以好氧硝化反應占優勢（圖7），生物濾池跌落曝氣的設計以及水生/兩棲植物的種植利于營造好氧狀態，加快污水TN、TDN、NO2--N、NH4+-N的去除過程。
4、結論
本研究通過對生物濾池污水凈化的連續監測，發現生物濾池對NH4+-N、NO2--N年平均去除率達到50%以上。這些氮素污染物的去除過程主要由好氧氨氧化、好氧亞硝酸鹽氧化和硝化作用微生物共同參與，生物濾池內的優勢菌門和菌屬在這些過程中也發揮了重要作用。不同層級生物濾池污水TN、NH4+-N、DOC、TDN、NO2--N差異顯著（P<0.05），同時層級間生物濾池微生物β多樣性差異顯著，上層濾池水體（W2）優勢菌以好氧和兼性菌為主，下層濾池水體（W5、W6）存在優勢厭氧菌，這是生物濾池層級間細菌群落組成的重要差異，可能與層級間污水氮素污染物的形態及濃度變化有關。研究結果為深入探討生物濾池脫氮的微生物機制提供了科學數據，并可為村鎮生物濾池的構建提供微生物信息參考。本研究僅采集第二層和第五層生物濾池的底泥樣品，尚未能開展底泥與水體微生物內在聯系的研究，同步研究底泥和水體微生物群落及代謝特征對揭示生物濾池污水凈化的微生物作用機制將具有重要價值。（來源：中國科學院成都山地災害與環境研究所，中國科學院山地表生過程與生態調控重點實驗室，中國科學院大學，中國三峽建工（集團）有限公司）
